Microscopía Óptica Avanzada y Bioimagen

• Microscopía de luz transmitida
• Microscopía de fluorescencia
• Microscopía confocal
• Imagen 3D
• Análisis de alto contenido (HCS) por microscopía confocal
• Cell Painting
• Microscopía de Células Vivas
• Microscopía de expansión
• Microscopía Correlativa (CLEM)
• Microscopía Multifotón
• Microscopía de Generación de Segundo Armónico
• Microscopía intravital

• Microscopio confocal Leica TCS-SP8 equipado con 4 líneas láser de excitación (405 nm, 488 nm, 552 nm y 638 nm), 4 detectores (2 PMTs y 2 detectores HyD) para adquisición de imagen de hasta 4 canales simultáneamente, control de CO₂ y temperatura, un escáner resonante para estudios en células vivas, módulo de automatización para cribado de alto contenido (HCS-A) y módulo de superresolución (HyVolution II).





• Microscopio confocal/multipotón Leica TCS SP8 Dive. Este sistema también está equipado para poder realizar microscopía intravital. Dispone de 3 líneas láser de excitación (488 nm, 552 nm y 638 nm), 1 láser infrarrojo Spectra-Physics InSight X3 para la excitación multifotón, sintonizable entre 800nm y 1300 nm, y 4 detectores espectrales (2 PMTs y 2 detectores HyD-NDD).





• Microscopio invertido de fluorescencia Zeiss Apotome II, equipado con una fuente de luz LED flexible (Colibri 7) que permite excitación desde 405 nm hasta 633 nm.



• Escáner de portaobjetos Leica Aperio Versa para imagen en campo claro, fluorescencia y FISH, equipado con un cargador para 200 portaobjetos que permite el procesamiento automatizado por lotes de 50 portas, sin necesidad de supervisión.



• Microscopio invertido de fluorescencia Leica DMI6000B equipado con controles de CO2 y temperatura para estudios de células vivas.



• Microscopio invertido de fluorescencia Leica DMI6000B.



• Microscopio invertido de fluorescencia Leica DMI8.



• Microscopio invertido Olympus IX71 equipado con un sistema láser PALM para microdisección y captura de muestras, sin contacto.



• Estación de trabajo para el procesado, visualización y análisis de imagen.

• Recogida y almacenamiento de muestras.
• Procesamiento de muestras y marcaje fluorescente en células vivas y fijadas (inmunotinción).
• Adquisición de datos.
• Procesamiento de imágenes.
• Asesoramiento técnico.

Ciencias Biomédicas

• Células Fijadas:
• Análisis inmunocitoquímico.
• Protocolos de co-localización.
• Crecimiento celular en biomateriales.
• Interacciones proteicas y cambios conformacionales mediante FRET.
• Microscopía de expansión.
• Microscopía correlativa (CLEM).
• Microscopía de generación de segundo armónico.
• Análisis de alto contenido por microscopía confocal (HCS).

• Células Vivas:
• Citotoxicidad, cambios en la actividad mitocondrial, internalización de fármacos, etc.
• Mecanismos fisiológicos: comunicación celular, movilidad de componentes de membrana, interacciones proteicas, cambios conformacionales, etc., mediante FRET, FRAP o FLIP.
• Estudios cinéticos de iones intracelulares: Ca+2, Na+, Mg+2, etc.
• Migración celular.
• Análisis de alto contenido por microscopía confocal (HCS)

• Tejido:
• Análisis inmunohistoquímico.
• Protocolos de co-localización.
• Microscopía de expansión.
  
  
• Microscopía multifotónica.

• Animal:
• Microscopía intravital

Ciencia de Materiales

• Análisis de morfología y defectos en sólidos como microelectrónica, polímeros, resinas, minerales, cerámicas, metales, etc., así como el estudio de perfiles de rugosidad superficial. Estas técnicas son aplicables a campos tan diversos como ingeniería (control de calidad, análisis de corrosión, etc.), paleontología, forense, geología, implantología dental y análisis óseo, entre otros.
• Análisis volumétrico de inclusiones fluidas en hidrocarburos.

Ciencia de los Alimentos

• Caracterización microestructural de alimentos.